感受态细胞转化效率的高低与哪些因素有关

2020-11-23 09:12:07 字数 4503 阅读 9340

1楼:匿名用户

1.细菌的生长状态:实验中应密切注视细菌的生长状态和密度,尽量使用对数生长期的细胞(一般通过检测od600来控制。dh5α菌株 od600为 0.

5 时细胞密度是 5 × 107/ml );

2.所有操作均应在无菌条件和冰上进行;

3.经 cacl2处理的细胞,在低温条件下,一定的时间内转化率随时间的推移而增加, 24小时达到最高,之后转化率再下降(这是由于总的活菌数随时间延长而减少造成的);

4.化合物及无机离子的影响:在 ca2+的基础上联合其他二价金属离子(如 mn2+或 co2+)、 dmso 或还原剂等物质处理细菌,可使转化效率大大提高,一般来讲 cacl2 /cocl2法及二甲基亚砜(dmso)等可以提高转化率很多倍(100-1000);

5.所使用的器皿必须干净。迹量的去污剂或其它化学物质的存在可能大大降低细菌的转化效率;

6.质粒的大小及构型的影响:用于转化的应主要是超螺旋的 dna ;

影响感受态细胞转化效率的因素有哪些

2楼:匿名用户

1.感受态细胞的质量,比如超级感受态比普通感受态转化效率高很多;2.质粒浓度及质量,连接产物因为质粒浓度低,纯度低转化效率比纯的质粒低很多;3.

转化条件,如热激冷激的温度时间等;4.活化培养的条件,soc培养基优于lb培养基;5.涂布用的培养基及抗生素浓度等。

要提高质粒的转化效率, 实验中要考虑几个重要因素?求大神赐教

3楼:匿名用户

一般要考虑以下几点 1. 细胞生长状态和密度: 不要用经过多次转接或储于4℃的培养菌,最好从-70℃或-20℃甘油保存的菌种中直接转接用于制备感受态细胞的菌液。

细胞生长密度以刚进入对数生长期时为好,可通过监测培养液的od600 来控制。dh5α菌株的od600 为0.5时,细胞密度在5×107 个/ml左右(不同的菌株情况有所不同),这时比较合适。

密度过高或不足均会影响转化效率.

2. 质粒的质量和浓度: 用于转化的质粒dna应主要是超螺旋态dna(cccdna)。

转化效率与外源dna的浓度在一定范围内成正比,但当加入的外源dna的量过多或体积过大时,转化效率就会降低。1ng的cccdna即可使50μl 的感受态细胞达到饱和。一般情况下,dna溶液的体积不应超过感受态细胞体积的5%。

3. 试剂的质量: 所用的试剂,如cacl2 等均需是最高纯度的(gr.或ar.),并用超纯水配制,最好分装保存于干燥的冷暗处。

4. 防止杂菌和杂dna的污染:整个操作过程均应在无菌条件下进行, 所用器皿, 如离心管, tip头等最好是新的,并经高压灭菌处理,所有的试剂都要灭菌,且注意防止被其它试剂、dna酶或杂dna所污染, 否则均会影响转化效率或杂dna的转入, 为以后的筛选、鉴定带来不必要的麻烦。

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影响淋巴细胞转化试验细胞转化率的因素有哪些

4楼:匿名用户

⑴、受体细胞转化的受体细胞一般是限制-修饰系统缺陷的突变株,即不含限制性内切酶和甲基化酶的突变株,它可容忍外源dna分子进入体内并稳定地遗传给后代。另外还应根据载体的性质及实验的目的选择合适的宿主。此外,受体细胞生长状态和密度也很重要。

不要使用经过多次转接或储存于4℃的培养菌。细胞生长密度以刚进入对数生长期时为好,密度过高或不足均会影响转化率。⑵、载体dna和重组dna方面载体本身性质决定了转化的高低,不同的载体dna转化同一受体细胞,其转化效率不同。

载体的空间构象也有明显影响,超螺旋结构的载体质粒往往有较高的转化率,经体外酶切连接操作后的载体dna或重组dna由于空间上难以恢复,其转化率常比cccdna低两个数量级。对以质粒为载体的重组分子而言,分子量大的转化效率低。⑶、操作方面感受态细胞的制备对转化率影响较大。

一般未经特殊处理的培养细胞对重组dna分子不敏感,难以转化成功。为防止杂菌和杂dna的污染,整个操作均应在无菌条件下进行,所有器皿最好是新的,并经高压灭菌处理,所有试剂也都要灭菌处理。⑷、转化体系中重组dna的浓度与纯度转化体系中重组dna的浓度与纯度对转化率也有一定影响。

在一定浓度范围内,浓度越高,转化率越高,重组dna纯度越高,转化率越高。⑸、外源基因与宿主染色体的同源性外源基因**与宿主亲缘关系越近,越易整合到宿主染色体中,转化率越高,否则易被宿主核酸酶降解而降低转化率。

验证感受态细胞转化效率时为什么用puc19质粒

5楼:阿鲁巴星人

因为质粒小,好转染

而且大家都用它,已经作为一个标准了

制备化转感受态细胞od低于0.3会影响转化效率么 40

6楼:阿鲁巴星人

当然会。

低于0.3细菌都没正式进入对数期,细菌状态不好,且菌量少,转化效率基本上不会高。

感受态细胞的转化要注意些什么

7楼:匿名用户

注意事项:

1.实验中所需氯化钙于冰浴后再使用

2.使用离心机前,要严格保证离心物品充分平衡,以免造成离心机损伤3.大肠杆菌感受态一定放冰上溶化

4.热激和冰浴时间要科学把握

8楼:匿名用户

此外(1)质粒dna的质量和浓度,环状重组质粒的转化率较分子量相同的线性重组质粒高10~100倍,则会使转化率下降;ml左右,且注意防止被其它试剂。(应注意od600值与细胞数之间的关系随菌株的不同而不同),大于30kb的重组质粒将很难进行转化:所用的cacl2等试剂均需是最高纯度的。

对tg1菌株。所有的试剂都要灭菌。对于以质粒为载体的重组分子而言:

用于转化的质粒dna应主要是超螺旋态的,并经高压灭菌处理,1ng的cccdna即可使50ul的感受态细胞达到饱和。一般地。细胞生长密度以每毫升培养液中的细胞数在5×107个左右为佳,所用器皿,并用最纯净的水配制,细胞密度在5×107个/:

整个操作过程均应在无菌条件下进行,分子量大的转化效率低,移液枪头等最好是新的,不能离开冰浴,重组dna分子的构型与转化效率也密切相关,否则细胞转化率将会降低,可通过测定培养液的od600控制、dna酶或杂dna所污染,转化率与外源dna的浓度在一定范围内成正比。密度过高或不足均会使转化率下降。不要用已经过多次转接。

(二)感受态细胞转化中的影响。(2)感受态细胞的质量。整个操作均需在冰上进行,但当加入的外源dna的量过多或体积过大时,dna溶液的体积不应超过感受态细胞体积的5%,实验证明,及贮存在4℃的培养菌液,因此重组dna大都构成环状双螺旋分子,最好分装保存于4℃ (3)细胞的生长状态和密度 最好从-70℃或-20℃甘油保存的菌种中直接转接用于制备感受态细胞的菌液。

即应用对数期或对数生长前期的细菌,否则均会影响转化效率或杂dna的转入,od600为0.5时,如离心管

感受态细胞的制备时有什么注意事项

9楼:天寂无痕

1、培养温度。较低的温度培养有利于感受态的形成,这样可以获得较高的感受态,但太低又不实用,因而产生了 inoue 的高效感受态制备方法,它实际是利用了所有有利于感受态的文献而得出的一

个非常理想方法。

2、在保存感受态时,dmso 要比甘油的效果要好,它会使感受态的效率增加。

3、液氮速冻也会使感受态的效率提高,因此推荐用液氮速冻感受态,然后保存于超低温冰箱内。

4、冻存的感受态用一次拿一管,不要反复冻融。化冻之后立即使用,不要冰上放太久。

5、操作时可以轻弹轻甩,尽量避免用移液器吹吸。

10楼:y神级第六人

(1)质粒dna的质量和浓度:

用于转化的质粒dna应主要是超螺旋态的,转化率与外源dna的浓度在一定范围内成正比,但当加入的外源dna的量过多或体积过大时,则会使转化率下降。一般地,dna溶液的体积不应超过感受态细胞体积的5%,1ng的cccdna即可使50ul的感受态细胞达到饱和。对于以质粒为载体的重组分子而言,分子量大的转化效率低,实验证明,大于30kb的重组质粒将很难进行转化。

此外,重组dna分子的构型与转化效率也密切相关,环状重组质粒的转化率较分子量相同的线性重组质粒高10~100倍,因此重组dna大都构成环状双螺旋分子。

(2)感受态细胞的质量:

所用的cacl2等试剂均需是最高纯度的,并用最纯净的水配制,最好分装保存于4℃

(3)细胞的生长状态和密度

最好从-70℃或-20℃甘油保存的菌种中直接转接用于制备感受态细胞的菌液。不要用已经过多次转接,及贮存在4℃的培养菌液。细胞生长密度以每毫升培养液中的细胞数在5×107个左右为佳。

即应用对数期或对数生长前期的细菌,可通过测定培养液的od600控制。对tg1菌株,od600为0.5时,细胞密度在5×107个/ml左右。(应注意od600值与细胞数之间的关系随菌株的不同而不同)。

密度过高或不足均会使转化率下降。

(二)感受态细胞转化中的影响:

整个操作过程均应在无菌条件下进行,所用器皿,如离心管,移液枪头等最好是新的,并经高压灭菌处理。所有的试剂都要灭菌,且注意防止被其它试剂、dna酶或杂dna所污染,否则均会影响转化效率或杂dna的转入。整个操作均需在冰上进行,不能离开冰浴,否则细胞转化率将会降低。

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