1楼：匿名用户
都适用，建议采用wst（cck8）法，省去了甩板步骤，准确率比mtt高
2楼：
目前做的细胞都适用，最好是贴壁的，不贴壁的话要离心，没有离心培养板的离心机会有点麻烦
3楼：潮秋机代梅
mtt法又称mtt比色法，是一种检测细胞存活和生长的方法。
测定细菌对细胞的毒性试验最好用ldh还是mtt法
4楼：匿名用户
⒈选择适当的细胞接种浓度。一般情况下，96孔培养板的一内贴壁细胞长满时约有105个细胞。但由于不同细胞贴壁后面积差异很大，因此，在进行mtt试验前，要进行预实验检测其贴壁率、倍增时间以及不同接种细胞数条件下的生长曲线，确定试验中每孔的接种细胞数和培养时间，以保证培养终止致细胞过满。
这样，才能保证mtt结晶形成数量与细胞数呈的线性关系。否则细胞数太多敏感性降低，太少观察不到差异。
⒉药物浓度的设定。一定要多看文献，参考别人的结果再定个比较大的范围先初筛。根据自己初筛的结果缩小浓度和时间范围再细筛。
切记！否则，可能你用的时间和浓度根本不是药物的有效浓度和时间。
⒊ 时间点的设定。在不同时间点的测定od值，输入excel表，最后得到不同时间点的抑制率变化情况，画出变化的曲线，曲线什么时候变得平坦了（到了平台期）那个时间点应该就是最好的时间点（因为这个时候的细胞增殖抑制表现的最明显）。
⒋培养时间。200ul的培养液对于10的4～5次方的增殖期细胞来说，很难维持68h，如果营养不够的话，细胞会由增殖期渐渐趋向g0期而趋于静止，影响结果，我们是在48h换液的。
⒌mtt法只能测定细胞相对数和相对活力，不能测定细胞绝对数。做mtt时，尽量无菌操作，因为细菌也可以导致mtt比色od值的升高。
⒍理论未必都是对的。要根据自己的实际情况调整。
⒎实验时应设置调零孔，对照孔，加药孔。调零孔加培养基、mtt、二甲基亚砜。对照孔和加药孔都要加细胞、培养液、mtt、二甲基亚砜，不同的是对照孔加溶解药物的介质，而加药组加入不同浓度的药物。
⒏避免血清干扰。用含15%胎牛血清培养液培养细胞时，高的血清物质会影响试验孔的光吸收值。由于试验本底增加，会试验敏感性。
因此，一般选小于10%胎牛血清的培养液进行。在呈色后，尽量吸净培养孔内残余培养液。 mtt 溶液的配制方法
通常，此法中的mtt 浓度为5mg/ml。因此，可以称取mtt 0.5克，溶于100 ml的磷酸缓冲液（pbs）或无酚红的培养基中，用0.
22μm滤膜过滤以除去溶液里的细菌，放4℃ 避光保存即可。在配制和保存的过程中，容器最好用铝箔纸包住。
需要注意的是，mtt法只能用来检测细胞相对数和相对活力，但不能测定细胞绝对数。在用酶标仪检测结果的时候，为了保证实验结果的线性，mtt 吸光度最好在0-0.7 范围内。
mtt一般最好现用现配，过滤后4℃避光保存两周内有效，或配制成5mg/ml保存在-20度长期保存，避免反复冻融，最好小剂量分装，用避光袋或是黑纸、锡箔纸包住避光以免分解。我一般都把mtt粉分装在ep管里，用的时候现配，直接往培养板中加，没必要一下子配那么多，尤其当mtt变为灰绿色时就绝对不能再用了。
mtt有致癌性，用的时候小心，有条件最好带那种透明的簿膜手套.配成的mtt需要无菌，mtt对菌很敏感；往96孔板加时不避光也没有关系，毕竟时间较短，或者你不放心的时候可以把操作台上的照明灯关掉.
配制mtt时用用pbs溶解，也有人用生理盐水配，60℃水浴助溶。
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