大肠杆菌感受态细胞转化实验中冰浴的作用是什么

2021-01-11 16:40:44 字数 4970 阅读 9854

1楼:匿名用户

冰浴过程中,原来加在溶液中的钙离子和细菌细胞膜结合,在低温下形成液晶结构,这样,在42度热激下,这种液晶结构收缩,将细胞膜扯开孔道,使dna进入细菌细胞中。这就是原理。 前面冰浴不清楚,热激我认为是让已经有孔的大肠杆菌孔膨胀,增加dna进入的几率,然后立刻冰浴,使孔收缩,进去的dna不要出来。

个人想法,没看到过类似文献。

你在ncbi上查查第一个利用大肠杆菌转化的人,他是怎么做的。文献里肯定有原理说明,不过可能是几十年前的文献了。

2楼:匿名用户

前面冰浴不清楚,热激我认为是让已经有孔的大肠杆菌孔膨胀,增加dna进入的几率,然后立刻冰浴,使孔收缩,进去的dna不要出来。个人想法,没看到过类似文献。

你在ncbi上查查第一个利用大肠杆菌转化的人,他是怎么做的。文献里肯定有原理说明,不过可能是几十年前的文献了。

3楼:浙大阿米巴

提高转化率。

具体原理我不知道。

大肠杆菌感受态细胞转化实验中没冰浴就热击会怎样?

4楼:冰锋

冰浴是为了质粒附着在菌体表面,热击是打开通道让质粒进入,觉得lz的做法影响不大,不过要实际验证

为什么制备大肠杆菌感受态细胞冰浴

5楼:阿鲁巴星人

因为你在加入钙离子之后,细胞很脆弱,需要低温,这样可以保护它。

大肠杆菌感受态细胞制备时的cacl2浓度到底是多少

6楼:匿名用户

(1)质粒dna的质量和浓度: 用于转化的质粒dna应主要是超螺旋态的,转化率与外源dna的浓度在一定范围内成正比,但当加入的外源dna的量过多或体积过大时,则会使转化率下降。一般地,dna溶液的体积不应超过感受态细胞体积的5%,1ng的cccdna即可使50ul的感受态细胞达到饱和。

对于以质粒为载体的重组分子而言,分子量大的转化效率低,实验证明,大于30kb的重组质粒将很难进行转化。此外,重组dna分子的构型与转化效率也密切相关,环状重组质粒的转化率较分子量相同的线性重组质粒高10~100倍,因此重组dna大都构成环状双螺旋分子。 (2)感受态细胞的质量:

所用的cacl2等试剂均需是最高纯度的,并用最纯净的水配制,最好分装保存于4℃ (3)细胞的生长状态和密度 最好从-70℃或-20℃甘油保存的菌种中直接转接用于制备感受态细胞的菌液。不要用已经过多次转接,及贮存在4℃的培养菌液。细胞生长密度以每毫升培养液中的细胞数在5×107个左右为佳。

即应用对数期或对数生长前期的细菌,可通过测定培养液的od600控制。对tg1菌株,od600为0.5时,细胞密度在5×107个/ml左右。(应注意od600值与细胞数之间的关系随菌株的不同而不同)。

密度过高或不足均会使转化率下降。 (二)感受态细胞转化中的影响: 整个操作过程均应在无菌条件下进行,所用器皿,如离心管,移液枪头等最好是新的,并经高压灭菌处理。

所有的试剂都要灭菌,且注意防止被其它试剂、dna酶或杂dna所污染,否则均会影响转化效率或杂dna的转入。整个操作均需在冰上进行,不能离开冰浴,否则细胞转化率将会降低。

感受态细胞的制备时有什么注意事项

7楼:置嚼勒眯

方法一:细菌转化的方法多以mendel和higa(1970)的发现为基础,其基本方法是用冰预冷的cacl2或多种2价阳离子等处理细菌,使之进入感受态得以转化。用cacl2制备新鲜或冷冻的大肠杆菌感受态细胞,常用于成批制备感受态细菌。

本法适用于大多数大肠杆菌菌株,且迅速、重复性好。操作过程简述如下。1.从37℃培养16~20h的新鲜平板中挑取一个单菌落(如大肠杆菌dh52),或1ml新鲜的16~20h过夜培养物,转到一个含有100mllb培养基的1l或500ml烧瓶中。

于37℃剧烈振摇培养约2~3h(旋转摇床200~300r/min),每隔20~30min测量od600值≈0.4。2.在无菌条件下将细菌转移到一个,用冰预冷的50ml聚丙烯离心管中,在冰上放置10~20min。

3.于4℃用sorvallgs2转头(或与其离心管相配的转头)以4000r/min离心10min,以**细胞。4.倒数培养液,将管倒置1min以使最后残留的痕量培养液流尽。5.以10ml用冰预冷的0.

1mmcacl2重悬每份沉淀,放于冰上。6.于4℃用sorvallgs3转头(或与其相应的转头)以4000r/min离心10min,以**细胞。7.倒出培养液,将管倒置1min以使最后残留的痕量培养液流尽。

8.每50ml初始培养物用2ml冰预冷的0.1mcacl2重悬每份沉定,此时,可以迅速将细胞分装成小份,液氮中冰冻,-70℃贮存备用。9.用冷却的无菌吸头从每种感受态细胞悬液中各取200μl转移到无菌的微量离心管中,每管加dna或连接反应混合物(体积≤10μl,dna≤50ng),轻轻旋转以混匀内容物,在冰中放置30min。

10.将离心管放到预加温到40℃的循环水浴中的试管架上,放置90s~2min,不要摇动试管。11.快速将管转移到冰浴中,使细胞冷却1~2min。12.每离心管加800μlsoc培养基,用水浴将培养基加温到37℃,然后将管转移到37℃摇床上,温育45min使细菌复苏,并且表达质粒编码的抗生素抗性标记基因。

13.将适当体积(每个90mm平板可达200μl)已转化的感受态细胞转移到含200mmol/lmgso4和相应抗生素的sob培养基上。14.将平板置于室温至液体被吸收。15.倒置平皿,于37℃培养,12~16h后可出现菌落。

方法二:cassuperone-step***petentcellprepskit采用一种简单便捷的方法处理大肠杆菌,使其成为感受态细胞,便于质粒dna的转化,可满足一般实验的要求。与cacl2法相比具有多种优点:

使用方便,只需一步即可完成感受态细胞的制备;转化效率略高于cacl2法,一般可达106-108cfu/μg,满足一般实验需要;感受态细胞制成后即可保存于-70℃,无须加入甘油,并且经长期保存活力无明显下降。准备工作:1.从液氮或低温冰箱中取出的大肠杆菌冻存菌,在lb平板上划线,37度过夜至长出单菌落。

挑形态饱满的单菌落2个,分别接种5mllb培养基中,37℃,250rpm,过夜培养。2.次日从5mllb培养物吸取200μl转入50mllb培养基中(250ml锥形瓶),37℃,250rpm培养2小时,此时od600约0.4—0.

5。感受态细胞的制备:3.吸取1ml菌液到1.

5ml离心管里,5000rpm离心5分钟,弃去上清。4.加入100μl预冷的solutiona,悬浮菌体,冰浴30分钟。5.此时感受态细胞已经制成可立即使用或-70℃保存。

细胞转化:6.在感受态细胞中加入100pg-10ngdna,混匀,冰浴30分钟,然后42℃1分钟热击,再次冰浴2分钟。加入0.

9mllb培养基,20μlsolutionb,37℃,振荡培养1小时。7.取适当菌液(100-200μl)涂布相应抗性的平板。8.过夜培养约16个小时,数菌落数,计算转化率。

补充说明:1.所用器具一定要清洁;2.操作步骤2中培养基的装量也是很重要的,建议装量不要高于此值:500ml锥形瓶装100ml培养基,250ml锥形瓶装50ml培养基;3.在收获菌体前半小时还可以在培养基中加入20mm的mgcl2,效果会更好一些;4.为保证细胞处于对数生长期,培养后的菌体的od值不要高于0.

6;5.制备感受态细胞时所有操作尽量保证在冰上操作;6.细胞转化操作步骤6中也可以不必进行热击,冰浴后直接加入新鲜lb,简化操作步骤,但转化效率低于热击方法,适用于对转化率要求不高的实验。方法三:1、取1%大肠杆菌e.

coli接种于含2mllb培养基的试管中,37℃振荡培养过夜2、取0.1ml过夜培养物转种于含10mllb培养基的三角瓶中,37℃振荡培养3h至od600=0.3ml离心管中,冰浴10min。

4、在4℃下以4000rpm离心5min,去上清液5、把菌体悬浮于15m1冰冷的0.1mcacl2溶液中,置冰上30min6、然后再在4℃下以4000rpm离心10min,去上清液7、将菌体悬浮于0.1mlcacl2溶液中,冰浴放置4-12hr备用。

方法四:(1)将1ml过夜培养的细菌(如dh52、tg1、tm101)接种于100ml2×yt培养于500ml烧瓶。于37℃刷烈振荡,通常≥200rpm培养的细菌密度约od550=0.

2~0.5(5×107cells/ml),需2~4h。(2)将培养物放于冰上致冷10min,于4℃离心细菌培养物,10000rpm离心10min。

(3)弃除上清,将细菌悬浮于原始培养体积的一半(约50ml)的50mmcacl2和10mmtris·hcl(ph8.0)无菌冷冻液体中。(4)将细菌悬浮放在冰上约5min,然后将悬浮物于4℃10000/rpm离心10min。

(5)弃上清,悬浮细菌于原始培养体积的1/15的50mmcacl和10mmtris·hcl(ph8.0)无菌冷冻中。此时的细胞是感受态细胞,即可用于转化。

200μl分装于无菌的1.5ml微量离心管中,贮存于-80℃冰箱中。方法五:

tsb法(也是本人热衷的方法)1.药品制备1mmg2+(1mmgso4和1mmgcl2等体积混合),用0.22um滤膜超滤除菌。

tsb液(30ml/80ml菌液)(现配现用):peg33503gtryptone0.3gyeastextract0.

15gnacl0.3g2.步骤:

(1)活化菌株(2)挑单菌落培养于5ml的液笨培养基中(3)取液体培养物50ul于80ml的液体培养基中进行扩大培养(4)370c培养3-4小时,od600在0.4-0.6(5)离心,去上清(6)加入20mltsb,重悬(7)离心,去上清(8)加入10mltsb,再加入15-20%的甘油,分装保存注,整个操作过程均应在冰上进行。

所用药品均需灭菌。转化程序(1)取出200μl感受态细胞慢慢使其溶化,并立即放于冰上,加入dna或连接反应混合物,dna量通常≤50mg。用手指弹打试管10次,使之混匀,然后放在冰上40~45min。

(2)将管放于42℃水浴中2min。(3)然后每管直接加入1.0ml2×yt培养基,倒置混匀,并于37℃培养8~12h,干浴或水浴,不需振摇。

此期间使细菌生长并开始表达抗菌素。(4)每200μl转化混合物分别于6个2×yt琼脂培养板上补充相应抗生素,并含有x-gal(20mg/ml)、iptg(200mg/ml)。

怎样检验感受态细胞转化是否成功,转化之后复苏感受态细胞能用加了氨苄的LB培养基吗

1楼 匿名用户 转化后铺含有相应抗生素的平板,如果有菌落长出,基本就是转化成功了。 怎样检验感受态细胞转化是否成功 2楼 匿名用户 当然是利用筛选平板了。 经典的就是蓝白斑实验。不过我们上学期做的红绿荧光蛋白的,直接用普通平板,到时观察有无荧光就行了。 3楼 匿名用户 将空载体转化上去,平板筛选,看...